Skogflåttencefalittvirus (TBE-virus)

Sist oppdatert: 23.09.2025
Godkjent av: Rikard Rykkvin
Godkjent dato: 23.09.2025
Utgiver: Folkehelseinstituttet
Versjon: 1.2
Forfatter: Åshild Kristine Andreassen Rikard Rykkvin
Kopier lenke til dette emnet
Foreslå endringer/gi kommentarer

Innledning 

Folkehelseinstituttet (FHI) har nasjonal referansefunksjon for skogflåttencefalittvirus (tick-borne encephalitis virus, TBEV).

 

Infeksjon med TBEV er nominativt meldepliktig til MSIS i gruppe A.

 

Det finnes flere kjente subtyper av viruset, og viruset overføres hovedsakelig via skogflått og taigaflått. I Norge er det kun skogflått og den europeiske TBEV-subtypen som er påvist1. Ved skogflåttencefalitt er det stor variasjon i det kliniske bildet, fra asymptomatisk til svært alvorlig sykdom. Symptomatiske infeksjoner med TBEV kan ha et klassisk bifasisk forløp.

 

  • Fase 1: Etter en inkubasjonsperiode på 1-2 uker kommer den første viremiske fasen (varer ca 1 uke) som ofte gir influensalignende symptomer. Dersom det blir tatt prøver i denne fasen, vil oftest RNA være påvisbart (ca 5 dager i serum, kortere tid i CSF), serologien negativ.
  • Fase 2: Etter en symptomfri periode på 3-4 dager eller lenger, vil 1/3 av pasientene gå videre til fase 2 med symptomer på sentral/perifer nerveaffeksjon. Prøver blir ofte tatt i denne fasen. RNA er som regel ikke påvisbart, men påvises noen ganger, spesielt hos immunsupprimerte pasienter2. IgM er som hovedregel positiv. IgG +/- avhengig av hvor langt ut i 2. fase prøven tas. Noen får nevrologiske senkomplikasjoner.

 

OBS: En del pasienter får et monofasisk forløp med kortere tid mellom eksponering/flåttbitt og nevrologiske symptomer. I en norsk multisenterstudie hadde 46% av symptomatiske pasienter monofasisk forløp3.

 

Les mer om skogflåttencefalitt i smittevernhåndboka og vaksinasjonshåndboka.

 

TBE-diagnostikk utføres ved flere av landets mikrobiologiske laboratorier.

Indikasjon 

  • Primærdiagnostikk: Det er spesielt viktig å være oppmerksom på muligheten for TBE-infeksjon hos pasienter med aseptisk meningitt/encefalitt, og som har oppholdt seg i risikoområde for TBE i flåttsesongen (april-oktober). Laboratoriet mottar serum fra pasienter med mistanke om TBE, og i tillegg spinalvæske der det er mistanke om vaksinesvikt (intratekal antistoffproduksjon). Disse pasientene vil ofte få en boostring av IgG og en forsinket IgM respons4.
  • Referansediagnostikk: verifisering/alternativ test ved påvist anti-TBEV IgM- eller IgG-antistoffer ved andre laboratorier i landet. Påvisning av intratekal antistoffproduksjon (antistoffindeks for spinalvæske/serum). Laboratoriet mottar serum og spinalvæske til PCR fra pasienter med mistanke om TBE i tidlig fase, evt. ved immunsuppresjon. PCR-positive prøver (serum og spinalvæske) forsøkes helgenomsekvensert hvis viruskonsentrasjon er høy nok.
  • Immunitetsstatus: Beskyttende antistoffnivå for TBE er ikke kjent, rutinemessig kontroll av antistoffer etter vaksinasjon anbefales derfor IKKE.

Innsendingsplikt 

En av oppgavene for laboratorier med nasjonal referansefunksjon er å opprettholde en samling av stammer og annet referansemateriale. I den forbindelse ber vi om at prøver med påvist IgM sendes til oss for verifisering, lagring og distribusjon.

Rekvisisjon og forsendelse 

For innsending benyttes Rekvisisjon for mikrobiologiske undersøkelser.

 

Følgende opplysninger fylles ut avhengig av indikasjon:

  • Klinikk (inkl. symptomer/sykdomsfase, varighet, tidspkt. for eksponering for flåttbitt og sykdomsdebut) og reiseanamnese (endemisk område?)
  • Eventuell immunsuppresjon
  • Eventuell behandling med IV immunoglobulin (passivt tilførte antistoffer)
  • Vaksinasjonsstatus, inkl. informasjon om tidligere vaksinasjon/infeksjon med andre flavivirus, da disse kan kryssreagere i IgG-testen.
  • Ved innsending av serum/spinalpar (helst tatt innenfor én times mellomrom) for vurdering av intratekal produksjon, må verdier for total-IgG og albumin i hhv. serum og spinalvæske påføres rekvisisjonen
  • Kontaktinformasjon til rekvirent ved mistanke om akutt infeksjon.
  • Referansediagnostikk: Resultat og verdi for analyser utført ved primærlaboratoriet.

 

Viser til Innsending av prøver til mikrobiologiske undersøkelser for postadresse.

Analyser og prøvemateriale 

AnalysePrøvematerialeMinimum prøvevolum*
TBEV IgM/IgG SERION ELISA classic FSME/TBE Virus IgG/IgM 

Serum eller EDTA-plasma

(Ved vurdering mtp. intratekal antistoffproduksjon må spinalvæske sendes i tillegg til serum, tatt innenfor én times mellomrom)

50µL serum

(150 µL spinalvæske)

TBEV IgM/IgG alternativ test Anti-TBE Virus ELISA 2.0 (IgG) /(IgM)

Serum eller EDTA-plasma

(Ved vurdering mtp. intratekal antistoffproduksjon må spinalvæske sendes i tillegg til serum, tatt innenfor én times mellomrom)

50µL serum

(150 µL spinalvæske)

TBEV-PCR real-time RT-PCR (in-house)** + pyrosekvensering

Påviser norske varianter av den europeiske subtypen (TBEV-EU)

Serum eller EDTA-plasma. Evt. spinalvæske (lavere sensitivitet). Urin***, hjernebiopsier, flått - etter avtale med fagansvarlig.

200µL

Sekundær TBEV-PCR5real-time RT-PCR (in-house)** + Sanger-sekvensering

Sekundærtest ved mistanke om andre subtyper og bekreftelse av usikkert resultat med primær PCR-metode.

Serum eller EDTA-plasma. Evt. spinalvæske (lavere sensitivitet). Urin***, hjernebiopsier, flått - etter avtale med fagansvarlig.

200µL

TBEV-NGS6 (in-house amplikonbasert sekvensering med Arctic-protokoll, Nanopore/Illumina)

PCR-positive prøver: Spinalvæske, serum, EDTA-plasma, flått, hjernebiopsi mm.

Etter avtale

*Ved minimum prøvevolum er det ikke mulig å repetere analyser eller evt. undersøke med supplerende analyser.

**TBE-virus er spesielt utsatt for degenerering ved unødvendig langvarig lagring og fryse-tining, spesielt hvis det er lite virus. Ved ønske om PCR-undersøkelse bør derfor prøven sendes kjølig og ankomme FHI samme/neste dag.

*** Det er påvist RNA i urinen i lengre tid enn i spinalvæske/serum hos enkeltkasus med encefalitt7,8.  Hvis PCR-undersøkelse av urin er aktuelt, bør slike prøver sendes til Sahlgrenska universitetssykehus

OPPBEVARING AV PRØVEMATERIALE 

Prøven fryses ned etter analysering og oppbevares i vårt frysearkiv i minst 10 år.

Svar  

TBE-IgM: kvalitativt (positiv/reaktiv/gråsone/negativ). Semikvantitativ ratio for OD/cut-off (semi-kvantitativ) oppgis i kommentar. Evt. antistoffindeks spinal/serum, med kvantitative verdier, hvis albumin og total-IgM i spinal/serum er oppgitt av rekvirent.

TBE-IgG: kvalitativt (positiv/reaktiv/gråsone/negativ). Semikvantitativ ratio for OD/cut-off (semi-kvantitativ) oppgis i kommentar. Evt. antistoffindeks spinal/serum, med kvantitative verdier, hvis albumin og total-IgG i spinal/serum er oppgitt av rekvirent.

TBE-RNA: kvalitativt (påvist/ikke påvist).

Svartid 

Svartid regnes fra prøven mottas til analysen er ferdig og er avhengig av kliniske opplysninger, hasteprøver må begrunnes. Resultater forenlig med akutt infeksjon vil forsøkes ringt ut.

 

  • Mistanke om akutt sykdom: 1-7 dager.
  • Utredningsprøver: 1-14 dager.

Tolkning 

Generelle betraktninger rundt tolkning

 

IgMIgGPCRTolkning
-/+-+

Forenlig med aktuell infeksjon

+--

Mulig aktuell infeksjon i 2. fase (isolert IgM kan være uspesifikk reaksjon). Kontrollprøve anbefales etter 2-3 uker mtp IgG-serokonversjon.

IgM kan persistere opptil 10 mnd i blod både hos vaksinerte og hos infiserte.

++*

Forenlig med aktuell infeksjon i 2. fase/nylig gjennomgått infeksjon/nylig vaksinasjon.

*TBE-RNA er vanligvis ikke påvisbart i 2. fase, og PCR utføres derfor ikke

--*

Ikke holdepunkt for aktuell TBE-infeksjon.

Immunsvekkede pasienter kan ha forsinket antistoffrespons.

*Ved klinisk mistanke om TBE i tidlig fase, eller ved immunsvikt, utføres evt. PCR, og serologi bør gjentas etter 2-3 uker

-+*

Tidligere gjennomgått TBE-virusinfeksjon, aktuell infeksjon i sen fase, eller vaksinasjon. Det er ofte høyere antistoffnivå etter gjennomgått infeksjon (eller ved vaksinasjon etter infeksjon).

Ved "vaksinesvikt" kan IgM-utvikling være forsinket eller mangle, og man kan evt. stille diagnosen utifra signifikant IgG-titerstigning, påvisning av antistoffer mot NS1-antigen, eller intratekal antistoffproduksjon (krever serum/spinal-par).

Kryssreaktivitet mot andre humanpatogene flavivirus (denguevirus, gulfebervirus, japansk encefalittvirus, zikavirus, vestnilvirus). Lavere spesifisitet enn IgM. Evt. nøytralisasjonstest ved Folkhälsomyndigheten, Sverige.

Behandling med IV immunglobulin kan medføre passiv tilførelse av TBE-virus IgG.

*TBE-RNA er ikke påvisbart ved tidligere gjennomgått infeksjon. PCR kan evt. være aktuelt ved mistanke om vaksinesvikt i akuttfase.

Fagansvarlige 

Endringshistorikk 

11.02.2022: Enzygnost IgM/IgG metoden er utgått.

Nyttige lenker 

Les mer om skogflåttencefalitt i smittevernhåndboka og vaksinasjonshåndboka..

 

En forskningsgruppe på FHI er involvert flere internasjonale prosjekter for å finne ut mer om utbredelse og prevalens av flåttbårne sykdommer. Prosjektene er samarbeid mellom forskere i Norge, Skandinavia og Europa. Les mer på prosjektenes hjemmesider.

ScandTick Innovation

TBFVnet

 

Referanser 

1Andreassen et al. Prevalence of tick borne encephalitis virus in tick nymphs in relation to climatic factors on the southern coast of Norway, Parasites and Vectors. 2012;5:177:1-12

 

2 Holten AR, Bjerkhaug AW, Maharjan U, Rykkvin R, Hagen T, Fevang B, Quist-Paulsen E, Hesstvedt L, Hognestad HR, Alfsnes K, Andreassen ÅK, Dunlop O A case of fatal hemorrhagic fever associated with tick-borne encephalitis virus infection. Int J Infect Dis. 2025 Jul 16;159:107989. DOI: 10.1016/j.ijid.2025.107989. Online ahead of print.

 

3 Hilde Skudal, Åslaug Rudjord Lorentzen, Tore Stenstad, Else Quist-Paulsen, Jens Egeland, Børre Fevang, Keson Jaioun, Bjørn Åsheim Hansen, Anne Marit Solheim, Yngvar Tveten, Malin Veje, Randi Eikeland, Hege Kersten. Clinical characteristics and factors affecting disease severity in hospitalized tick-borne encephalitis patients in Norway from 2018 to 2022. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2024 May 27;43(7):1355–1366. https://doi.org/10.1007/s10096-024-04855-2

 

4 Stiasny K, Holzmann H, Heinz FX. Characteristics of antibody responses in tick borne encephalitis vaccination breakthroughs . Vaccine . 2009;27(50):7021 7026

 

5 Benedikte N. Pedersen, Andrew Jenkins, Katrine M. Paulsen, Coraline Basset and Åshild K. Andreassen. Development of a Real-Time PCR Method for the Detection of European and Siberian Subtypes of Tick-Borne Encephalitis Virus. Microbiol. Res. 2023, 14, 1545–1558. https://doi.org/10.3390/microbiolres14040106

 

6 Maharjan U, Skudal HK, Asghar N, Soleng A, Johansson M, Lindstedt HEH, von Sydow AK, Pettersson JH, Johansen W, Fevang B, Bjerkreim R, Basnet S, Vikse R, Andreassen ÅK, Alfsnes K. Novel variants of tick-borne encephalitis virus from patient and tick samples in Norway. Ticks Tick Borne Dis. 2025 Jul;16(4):102501. DOI: 10.1016/j.ttbdis.2025.102501. Epub 2025 Jul 8.

 

7 Veje M, StudahlM, Norberg P, Roth A, MöbiusU, Brink M, et al. Detection of tick-borne encephalitis virus RNA in urine. J ClinMicrobiol. 2014;52(11):4111-2.

 

8 Quarsten H, Andreassen ÅK, Paulsen KM, Diekmann MJ, Eikeland R, Helleren R, Bergström T, Noraas S, Lorentzen ÅR. No detection of tick-borne encephalitis virus RNA in blood, urine or saliva of hospitalised immunocompetent tick-borne encephalitis patients. PLoS One. 2024 Jun 24;19(6):e0305603. doi: 10.1371/journal.pone.0305603. eCollection 2024. DOI: 10.1371/journal.pone.0305603