Mikrobiologiske analyser som begynner på ...
A
B
C
D
E
F
G
H
I
J
K
L
M
N
O
P
Q
R
S
T
U
V
W
X
Y
Z
Æ
Ø
Å

Parotitt-virus (kusma)

Sist oppdatert: 06.08.2024
  Sendeprøve: ja
Utgiver: Akershus universitetssykehus
Versjon: 1.1
Kopier lenke til dette emnet
Foreslå endringer/gi kommentarer

Innledning 

Folkehelseinstituttet (FHI) har referansefunksjon for kusma/parotittvirus. Kusma er nominativt meldepliktig til MSIS i gruppe A som ledd i nasjonal (og internasjonal) overvåkning. For informasjon om kusma vises det til smittevernveilederen.

 

Diagnostikk baserer seg på antistoffundersøkelse (serologi) og PCR. Serologi utføres ved flere av landets mikrobiologiske laboratorier, PCR utføres ved Ullevål, St. Olavs, Haukeland og FHI. Det er høy vaksinasjonsdekning for kusma i Norge, og flere andre vanligere virussykdommer kan gi parotitt (eks EBV, parainfluensa, influensa A, adenovirus, coxsackievirus). Parotitt kan og være bakteriell eller ikke-infeksiøs.

 

Det er imidlertid sett gjennombruddsinfeksjoner med kusma hos vaksinerte. Det er trolig først og fremst avtagende immunrespons over tid som gir redusert beskyttelse av vaksinen og risiko for utbrudd i miljøer med mye tett kontakt, immunevasjon (dvs. at varianter av viruset unnslipper vaksineindusert immunitet) kan også spille en rolle. Beskyttende antistoffnivå er ikke kjent.

Indikasjon  

  • Primærdiagnostikk ved mistanke om infeksjon med kusma. Alle mistenkte tilfeller bør få tatt serumprøve (serologi) samt prøve fra munnsekret (PCR) så snart som mulig etter symptomdebut. Sjansen for å påvise kusma med PCR er størst første 3 dager etter symptomdebut, det kan være forlenget virusutskillelse i urin.
  • Immunitetsstatus: utredning av tidligere gjennomgått infeksjon/vaksinasjon og vaksinasjonsrespons i spesielle tilfeller. Rutinemessig måling av antistoffer etter vaksinasjon er ikke anbefalt. Beskyttende antistoffnivå er ikke kjent.
  • Referansediagnostikk: verfisering/alternativ test ved påvist anti-parotittvirus IgM-antistoffer ved andre laboratorier i landet. PCR-positive prøver genotypes.

Innsendingsplikt 

Alle prøver der det har blitt påvist anti-parotittvirus IgM-antistoffer ved andre laboratorier i landet sendes til FHI for verifisering/alternativ test. PCR-positive prøver genotypes som ledd i overvåkningen.

Rekvisisjon og forsendelse 

For innsending benyttes Rekvisisjon for mikrobiologiske undersøkelser.

 

Følgende opplysninger fylles ut avhengig av indikasjon:

  • Klinikk, reiseanamnese, vaksinasjonsstatus, mistanke om utbrudd/nærkontakt til kjent tilfelle.
  • Kontaktinformasjon til rekvirent ved mistanke om akutt infeksjon.
  • Referansediagnostikk: Resultat og verdi på analyser utført ved primærlaboratoriet.

 

Viser til Innsending av prøver til mikrobiologiske undersøkelser for postadresse.

Analyser og prøvemateriale 

Analyse Prøvemateriale Minimum prøvevolum*
Kusma-IgM/IgG Serion Mumps virus/parotitis/Oreillons IgM/IgG Serum eller EDTA-plasma 50µL
Kusma-PCR real-time RT-PCR (CDC protokoll) Munnsekret/spytt**. Spinalvæske. Alternativt EDTA-plasma, serum; mindre aktuelt grunnet kort og lavgradig viremi i blod. Urin (ikke-validert prøvemateriale). 200µL
Kusma-genotyping Sanger-sekvensering av SH-genet PCR-positiv prøvemateriale 200µL

*Ved minimum prøvevolum er det ikke mulig å repetere analyser eller evt. undersøke med supplerende analyser.

** Spyttprøver tas med penselprøve som brukes til å suge opp munnsekret og sendes på virus transportmedium. Prøven tas fra munnslimhinne ved å rotere penselen langs innsiden av begge kinn på nivå med utførselsgangen av parotiskjertelen og under tungen.

Oppbevaring av prøvemateriale 

Prøven fryses ned etter analysering og oppbevares i vårt frysearkiv i minst 10 år

Svar  

Kusma-IgM: kvalitativt (positiv/reaktiv/gråsone/negativ). Ratio av OD-verdi (semi-kvantitativ) oppgis som tallverdi under kvalitativt svar.

Kusma-IgG: kvalitativt (positiv/reaktiv/gråsone/negativ). Ratio av OD-verdi (semi-kvantitativ) oppgis som tallverdi under kvalitativt svar.

Kusma-RNA: kvalitativt (påvist/ikke-påvist)

Kusma-genotyping: resultatene svares som regel ikke ut til rekvirent (med unntak av utbrudd), men rapporteres til MSIS.

Svartid 

Svartid regnes fra prøven mottas til analysen er ferdig og er avhengig av kliniske opplysninger, hasteprøver må begrunnes. Resultater forenlig med akutt infeksjon vil forsøkes ringt ut.

 

  • 1-14 dager.

Tolkning  

Generelle betraktninger rundt tolkning

 

IgM IgG RNA Kommentar/tolkning
- - - Ikke holdepunkt for aktuell/tidligere infeksjon eller vaksinasjon. Manglende immunitet. Negativ IgM i den akutte sykdomsfasen må konfirmeres med ny prøve.
+ -/+ - Kan tale for aktuell infeksjon. Uspesifikk IgM-reaksjon forekommer. Bør bekreftes med kontrollprøve for IgG-serokonversjon/titerstigning. Antistoffundersøkelsen kan ikke skille mellom infeksjon og vaksinasjon.
-/+ -/+ + Forenlig med aktuell infeksjon
- + - Tidligere gjennomgått infeksjon eller vaksinasjon. Ved aktuell infeksjon hos vaksinerte er ofte ikke PCR positiv selv tidlig i forløpet, og IgM-respons svak/fraværende. Ny prøve anbefales etter 2-3 uker for å vurdere evt IgG-titerstigning og/eller utvikling av IgM. En sterk positiv IgG-reaksjon kan tyde på boostring av pre-eksisterende IgG-antistoffer grunnet ny eksponering.

Merknader 

11.02.2022: Oppdaterte analyser ved parotittdiagnostikk: metodene Enzygnost anti-Parotitis IgM/IgG i serum og Microimmune Mumps IgM/IgG capture EIA i serum/munnsekret utgår.

Fagansvarlige  

Caroline V.Knudsen (medisinskfaglig ansvarlig lege)

Vilde W. Hanssen (faglig ansvarlig ingeniør serologi)

Coraline Basset (faglig ansvarlig ingeniør molekylære analyser)

 

Laboratoriet har ikke mulighet til å svare på henvendelser fra privatpersoner.