Folkehelseinstituttet (FHI) har referansefunksjon for kusma/parotittvirus. Kusma er nominativt meldepliktig til MSIS i gruppe A som ledd i nasjonal (og internasjonal) overvåkning. For informasjon om kusma vises det til smittevernveilederen.
Diagnostikk baserer seg på antistoffundersøkelse (serologi) og PCR. Serologi utføres ved flere av landets mikrobiologiske laboratorier, PCR utføres ved Ullevål, St. Olavs, Haukeland og FHI. Det er høy vaksinasjonsdekning for kusma i Norge, og flere andre vanligere virussykdommer kan gi parotitt (eks EBV, parainfluensa, influensa A, adenovirus, coxsackievirus). Parotitt kan og være bakteriell eller ikke-infeksiøs.
Det er imidlertid sett gjennombruddsinfeksjoner med kusma hos vaksinerte. Det er trolig først og fremst avtagende immunrespons over tid som gir redusert beskyttelse av vaksinen og risiko for utbrudd i miljøer med mye tett kontakt, immunevasjon (dvs. at varianter av viruset unnslipper vaksineindusert immunitet) kan også spille en rolle. Beskyttende antistoffnivå er ikke kjent.
Alle prøver der det har blitt påvist anti-parotittvirus IgM-antistoffer ved andre laboratorier i landet sendes til FHI for verifisering/alternativ test. PCR-positive prøver genotypes som ledd i overvåkningen.
For innsending benyttes Rekvisisjon for mikrobiologiske undersøkelser.
Følgende opplysninger fylles ut avhengig av indikasjon:
Viser til Innsending av prøver til mikrobiologiske undersøkelser for postadresse.
Analyse | Prøvemateriale | Minimum prøvevolum* |
Kusma-IgM/IgG Serion Mumps virus/parotitis/Oreillons IgM/IgG | Serum eller EDTA-plasma | 50µL |
Kusma-PCR real-time RT-PCR (CDC protokoll) | Munnsekret/spytt**. Spinalvæske. Alternativt EDTA-plasma, serum; mindre aktuelt grunnet kort og lavgradig viremi i blod. Urin (ikke-validert prøvemateriale). | 200µL |
Kusma-genotyping Sanger-sekvensering av SH-genet | PCR-positiv prøvemateriale | 200µL |
*Ved minimum prøvevolum er det ikke mulig å repetere analyser eller evt. undersøke med supplerende analyser.
** Spyttprøver tas med penselprøve som brukes til å suge opp munnsekret og sendes på virus transportmedium. Prøven tas fra munnslimhinne ved å rotere penselen langs innsiden av begge kinn på nivå med utførselsgangen av parotiskjertelen og under tungen.
Prøven fryses ned etter analysering og oppbevares i vårt frysearkiv i minst 10 år
Kusma-IgM: kvalitativt (positiv/reaktiv/gråsone/negativ). Ratio av OD-verdi (semi-kvantitativ) oppgis som tallverdi under kvalitativt svar.
Kusma-IgG: kvalitativt (positiv/reaktiv/gråsone/negativ). Ratio av OD-verdi (semi-kvantitativ) oppgis som tallverdi under kvalitativt svar.
Kusma-RNA: kvalitativt (påvist/ikke-påvist)
Kusma-genotyping: resultatene svares som regel ikke ut til rekvirent (med unntak av utbrudd), men rapporteres til MSIS.
Svartid regnes fra prøven mottas til analysen er ferdig og er avhengig av kliniske opplysninger, hasteprøver må begrunnes. Resultater forenlig med akutt infeksjon vil forsøkes ringt ut.
Generelle betraktninger rundt tolkning
IgM | IgG | RNA | Kommentar/tolkning |
- | - | - | Ikke holdepunkt for aktuell/tidligere infeksjon eller vaksinasjon. Manglende immunitet. Negativ IgM i den akutte sykdomsfasen må konfirmeres med ny prøve. |
+ | -/+ | - | Kan tale for aktuell infeksjon. Uspesifikk IgM-reaksjon forekommer. Bør bekreftes med kontrollprøve for IgG-serokonversjon/titerstigning. Antistoffundersøkelsen kan ikke skille mellom infeksjon og vaksinasjon. |
-/+ | -/+ | + | Forenlig med aktuell infeksjon |
- | + | - | Tidligere gjennomgått infeksjon eller vaksinasjon. Ved aktuell infeksjon hos vaksinerte er ofte ikke PCR positiv selv tidlig i forløpet, og IgM-respons svak/fraværende. Ny prøve anbefales etter 2-3 uker for å vurdere evt IgG-titerstigning og/eller utvikling av IgM. En sterk positiv IgG-reaksjon kan tyde på boostring av pre-eksisterende IgG-antistoffer grunnet ny eksponering. |
11.02.2022: Oppdaterte analyser ved parotittdiagnostikk: metodene Enzygnost anti-Parotitis IgM/IgG i serum og Microimmune Mumps IgM/IgG capture EIA i serum/munnsekret utgår.
Caroline V.Knudsen (medisinskfaglig ansvarlig lege)
Vilde W. Hanssen (faglig ansvarlig ingeniør serologi)
Coraline Basset (faglig ansvarlig ingeniør molekylære analyser)
Laboratoriet har ikke mulighet til å svare på henvendelser fra privatpersoner.