metodebok.no  Laboratorietjenester
 

Prøvetakingsmateriale

Blodkultur

Sist oppdatert: 26.09.2025
Mer informasjon
Utgiver: St. Olavs hospital
Versjon: 3.4
Forfattere: Kjersti Wik Larssen, Sveinung Javnes
Kopier lenke til dette emnet
Foreslå endringer/gi kommentarer

Indikasjon for prøvetaking 

  • Klinisk mistanke om systemisk infeksjon, sepsis, septisk sjokk,bakteremi. 
  • Ved nøytropen feber
  • Ved mistanke om vaskulær infeksjon (f.eks endokarditt)
  • Ved mistanke om bakteriell meningitt
  • Ved mistanke om akutt osteomyelitt
  • Ved mistanke om fremmedlegemeinfeksjoner (intravasale katetre, proteser)
  • Utredning av
    • akutte, subakutte eller kroniske infeksjonstilstander.
    •  feber av ukjent årsak.
  • Blodkulturer bør også, avhengig av klinikk, overveies ved:
    • Pyelonefritt
    • Pneumoni
    • Alvorlige hud- og bløtdelsinfeksjoner
  • Kontroll etter tidligere vekst i blodkultur
    • ved endokarditt bør positive blodkulturer kontrolleres (hver dag / hver 2. dag) etter oppstart med antibiotika fram til første negative kultur. Se også Metodebok infeksjonsmedisin-endokarditt
    • kontroll etter 48 timer ved påvist Staphylococcus aureus - bakteriemi. Se også Metodebok infeksjonsmedisin-sepsis
    • kontroll etter oppstart av behandling for påvist gjærsopp i blodbanen (candidemi). Det anbefales daglige blodkulturer inntil det kan dokumenteres at blodbanen er sterilisert. Se også Metodebok infeksjonsmedisin-invasiv candidiasis
    • ved manglende bedring etter 72 t behandling for påvist bakteriemi.
    • ved mistanke om resistensutvikling under pågående behandling 

 

Se også Blodkultur og Blodkultur (mykobakterier).

 

Ved klinisk mistanke om systemisk gjærsoppinfeksjon anbefales alltid Mycosis- flaske i tillegg til ordinære aerobe og anaerobe medier. 

 

For dyrkning av mykobakterier og dimorfe sopp fra blod må mikrobiologisk avdeling kontaktes før prøvetaking da dette krever egne blodkulturflasker (Myco/F Lytic).

Prøvetakingslokalitet 

  • Anbefalt prøvetakingssted er perifer vene.
  • Blodkulturer bør ikke tas via SVK eller andre inneliggende katetre grunnet kontamineringsfare, med mindre det ikke er mulig å få anlagt blodkulturer på annen måte. Dette må i såfall angis i kliniske opplysninger.
  • Ved mistanke om kateterrelatert blodbaneinfeksjon bør det tas blodkultur fra aktuelle kateter samtidig som det tas perifere blodkulturer.
  • Det bør tas minst to sett blodkulturer (2 aerobe og 2 anaerobe flasker) fra ulike stikk
    • Minst to sett bør som regel tas innen 24 timer.  
    • Ett ekstra sett kan vurderes for å øke sensitiviteten.
    • Dersom pasienten er vanskelig å stikke bør totalt blodvolum prioriteres over multiple stikk
  • Ved mistanke om endokarditt bør det tas tre sett blodkulturer i løpet av en time før oppstart av behandling. Hvis behandlingsstart avventes og blodkulturer foreløpig er negative, anbefales 1-2 nye sett neste dag. 
  • Ved mistanke om fungemi bør det tas to sett à tre flasker (2 aerobe, 2 anaerobe og 2 mycosis flasker) .
  • For barn må prøvetaking (dyrkningsmedie og volum)  tilpasses barnets vekt. Det tas for små barn rutinemessig bare blodkultur til aerob dyrkning. Se også Pediatriveileder. For nyfødte, se Nyfødtveileder - neonatal sepsis
    • > 36 kg: Samme anbefalinger som hos voksne anbefales.  
  • Prøvetaking bør om mulig gjøres i ekstremitet uten pågående infusjon.
  • Blodkulturer bør tas så snart som mulig etter symptomdebut, og blodkultursettene kan tas samtidig.
    • Prøvetaking bør alltid sikres før oppstart av antibiotikabehandling.
    • Dersom det allerede er startet antibiotikabehandling bør prøvetaking skje like før neste antibiotikadose, når antibiotikakonsentrasjonen er på sitt laveste.
    • Dersom det kun er gitt en dose ved oppstart av behandling bør prøvetaking skje så raskt som mulig. 

Prøvetakingsutstyr 

  • 1 sett med blodkulturflasker =  1 aerob og 1 anaerob flaske (ev. mycosis-flaske/pediatriflaske).
  • Desinfisert/steril adapter (flaskeholder) BD BACTECTM.
    • Steril engangsholder skal brukes, og kastes umiddelbart etter bruk! Ta ny holder for hvert stikk.
  • Veneprøvetakingssett (butterflykanyle).
  • Staseslange.
  • Tape og ren bomull.
  • Klorhexidin 5 mg/ml spritoppløsning, evt. desinfeksjonssprit (etanol) 70 %. 
    • Klorheksidinsprit er førstevalg for voksne og barn > 2 mnd. Unntak hos premature og nyfødte i første leveuke jf. Nyfødtveileder:

      • Klorhexidin 1 mg/ml (0.1 %) i vandig løsning uten etanol: Desinfisering av hud før alle prosedyrer hos premature med GA < 28 uker i første leveuke. Skjønnsmessig vurdering om det skal brukes (i stedet for Klorhexidinsprit 5 mg/ml) hos ekstremt premature barn eldre enn en uke hvis svært tynn hud. 

        Klorhexidinsprit 5 mg/ml (0.5 %) + 70 % etanol: Desinfisering av hud før innleggelse av kateter til alle barn med GA ≥ 28 uker og til alle nyfødte eldre enn en uke. 

  • Fabrikkframstilte desinfeksjonstørk (f. eks. Medi-swab®, Alkotip® o. l.) er ikke akseptable til dette bruk.
  • Sterile tupfere eller kompresser.

Dyrkningsmedier (Prøvebeholdere) 

  • Laboratoriet bruker medier av merket BD BACTECTM. Flaskene har vakuum, slik at de trekker blod når de koples til pasientens vene. Mediene har en sensor i bunnen av flaska; denne skal være brun.  
  • Flaskene har indikator for volum langs kanten av etiketten, angitt per 5 ml.  Denne må ikke tildekkes med pålimt etikett for pasientdata, da det er viktig å kunne avlese når flaska har trukket 10 ml blod.

 

 BlodkulturBeskrivelse

Aerob  flaske blå/grå kork (BD BACTEC Plus Aerobic/F Culture Vials).

  • Optimalisert for vekst av aerobe mikrober.
  • Gjærsopp vil også vokse i flasken.
  • Anbefalt blodmengde er 8–10 mL per flaske, minimum 5 mL

Anaerob flaske lillal/lilla kork (BD BACTEC Lytic/10 Anaerobic/F Culture Vials). 

  • Optimalisert for anaerobe og fakultative bakterier.
  • Anbefalt blodmengde er 8–10 mL per flaske, minimum 5 mL.

Mycosis flasker grå/grønn kork (BD BACTEC Mycosis IC/F Culture Vials).

  • Inneholder antibiotika og sikrer raskere oppvekst av gjærsopp. Flasken er bedre ved blandingsinfeksjoner med sopp og bakterier og Candida glabrata.
  • Anbefalt blodmengde er 8–10 mL per flaske, minimum 5 mL.
  • Det anbefales at soppflasken tas til slutt.

Aerob barneflaske sølv/rosa kork (BD BACTEC Peds Plus/F Culture Vials).

  • Aerob flaske spesiallaget for små blodvolum.
  • Anbefalt blodmengde er 1–3 mL per flaske, maksimum 5 mL.

Myco flasker rød/hvit kork (BD BACTEC Myco/F Lytic Culture Vials). Fås ved å kontakte mikrobiologen i åpningstiden:

  • Ikke-selektiv flaske for vekst av mykobakterier og dimorf sopp. Andre aerobe mikrober vil også vokse i flasken.
  • Anbefalt blodmengde 5 mL.
  • Inkuberes rutinemessig i 6 uker.

Prøvetaking 

  • Håndhygiene før og etter prosedyren, hansker bør brukes i tillegg.
  • Kontroller følgende på blodkulturflaskene:
    • At sensoren i bunnen av flaskene er tilstede (brun bunn).
    • Utløpsdato for mediet.
    • At flaskene er uten sprekker.
    • Flaskehalsen er fri for resinkuler (snu flasken et par ganger for å fjerne eventuell «resinpropp»).
  • Sett flasken loddrett på et bord. Finn væskenivået og tell deg 10 ml opp ved hjelp av målesøylen på etiketten. Det er 5 ml per strek på søylen. Sett et merke med en penn eller tusj 10 ml over væskenivået. Fyll flasken opp til, men ikke over, markeringen.
  • Brekk av plastdekslene på blodkulturflaskene. Desinfiser gummimembranene (gummihettene) med steril tupfer/kompress med desinfeksjonssprit 70 %, evt. klorhexidin spritoppløsning 5 mg/ml. La spriten virke i minst 15 sekunder (eller la den tørke) før membranene punkteres.
  • Kople holderen til veneprøvetakingssettet (butterflykanylen). Eventuelt kan ferdigmontert veneprøvetakingssett med holder benyttes.
  • Fest staseslangen og finn en egnet vene å ta prøven i. Løsne staseslangen når venen er lokalisert.
  • Desinfiser huden med steril tupfer med desinfeksjonssprit 70 %, evt. klorhexidin spritoppløsning 5 mg/ml. Vent ca. 60 sekunder.
  • NB! Premature barn og nyfødte i første leveuke tåler ofte ikke klorhexidinholdig sprit 5mg/ml (se punkt under «Prøvetakingsutstyr»)
  • Med en ny steril tupfer desinfiseres huden med sprit en gang til. Vent ca. 60 sekunder.
  • Huden skal lufttørkes helt mellom de to påføringene og før perforasjon av huden, da det er fare for at klorhexidinsprit kan kontaminere blodet.
  • Etter at huden er desinfisert, må innstikkstedet ikke palperes.
  • Stram staseslangen.
  • Punkter venen med butterflykanylen. Det vil komme litt blod i slangen når kanylen står inne i venen. Fest butterflykanylen med tape til huden. Sørg for at pasienten ikke beveger seg slik at kanylen forskyver seg i venen.
  • Sett den aerobe flasken (blå topp) inn i holderen først og la den trekke 8-10 mL blod. Løsne staseslangen med en gang det kommer blod. Korrekt volum er viktig – noter på flasken dersom en ikke lykkes å fylle korrekt mengde blod.
  • Sett anaerob flaske (lilla topp) inn i holderen og la flasken trekke 8-10 mL ml blod.
    • OBS! Vakuumet i flasken overgår vanligvis 10 ml, så brukeren må overvåke det innsamlede volum ved å se på 5 ml-graderingsmerkene på etiketten på flasken. Anaerob flaske må kobles ut fra holderen før kanyle fjernes.
  • Evt. soppflaske til slutt. Sett Mycosisflasken (grønn topp) inn i holderen og la flasken trekke 8-10 mL ml blod.
  • Fjern kanylen og dekk innstikkstedet med ren bomull og tape. 
  • Merk begge flaskene med etikett med pasientdata.  Sørg for at etikett står riktig vei; strekkoden på etiketten skal ligge samme vei som strekkoden på blodkulturflasken. OBS! Ikke tildekk strekkoden på blodkulturflasken.
  • NB! Alternativt kan 20 ml blod (evt. mindre fra barn) aspireres i sprøyte. Blodet fordeles på de to kulturflaskene (aerob barneflaske til barn) med steril prosedyre.

Forsendelse 

  • Må transporteres til laboratoriet fortløpende for inkubering i blodkulturskap etter prøvetaking

  • Blodkulturer bør settes i blodkulturskap innen maksimalt 4 timer etter prøvetaking, helst innen 2 timer.
  • Oppbevares i romtemperatur i påvente av inkubering

Merknader 

Også andre presumptivt sterile væsker kan vurderes dyrket på blodkulturmedier forutsatt tilstrekkelig prøvemateriale. Se Sterile væsker. Dette gjelder særlig 

  • Dialysat fra peritonealdialysepasienter. Sendes i tillegg til dialysat på sterilt glass/ sprøyte.
  • Pleuravæske ved mistanke om pleuraempyem. Sendes i tillegg til pleuravæske på Universalbeholder/sprøyte med kork. 
  • Leddvæske ved mistanke om akutt bakteriell artritt. Særlig viktig ved mistanke infeksjon med Kingella kingae hos barn < 5 år. Sendes i tillegg til leddvæske på Universalbeholder/sprøyte med kork. 
  • Leddvæske ved mistanke om proteseinfeksjon. Sendes i tillegg til leddvæske på Universalbeholder/sprøyte med kork. 
Gi tilbakemelding
Fortell oss gjerne hva du var fornøyd med eller misfornøyd med på denne nettsiden.

Vi kan ikke love deg svar på tilbakemeldingen din, men bruker den til å forbedre innholdet. Vi ber om at du ikke deler person- eller helseopplysninger.
Send
Personvernerklæring Ansvarsfordeling Redaktører og forfattere Om metodebok.no
App Store
Google Play