Blodkultur

Faglig oppdatert: 09.03.2026
Publisert dato: 09.03.2026
Utgiver: St. Olavs hospital
Versjon: 4.1
Forfattere: Kjersti Wik Larssen, Sveinung Javnes
Foreslå endringer/gi kommentarer

Indikasjon for prøvetaking 

  • Klinisk mistanke om systemisk infeksjon, sepsis, septisk sjokk, bakteremi. 
  • Ved nøytropen feber
  • Ved mistanke om vaskulær infeksjon (f.eks endokarditt)
  • Ved mistanke om bakteriell meningitt
  • Ved mistanke om akutt osteomyelitt
  • Ved mistanke om fremmedlegemeinfeksjoner (intravasale katetre, proteser)
  • Utredning av
    • Akutte, subakutte eller kroniske infeksjonstilstander.
    • Feber av ukjent årsak.
  • Blodkulturer bør også, avhengig av klinikk, overveies ved:
    • Pyelonefritt
    • Pneumoni
    • Alvorlige hud- og bløtdelsinfeksjoner
  • Kontroll etter tidligere vekst i blodkultur
    • Ved endokarditt bør positive blodkulturer kontrolleres (hver dag / hver 2. dag) etter oppstart med antibiotika fram til første negative kultur. Se også Metodebok infeksjonsmedisin-endokarditt.
    • Kontroll etter 48 timer ved påvist Staphylococcus aureus - bakteriemi. Se også Metodebok infeksjonsmedisin-sepsis.
    • Kontroll etter oppstart av behandling for påvist gjærsopp i blodbanen (candidemi). Det anbefales daglige blodkulturer inntil det kan dokumenteres at blodbanen er sterilisert. Se også Metodebok infeksjonsmedisin-invasiv candidiasis.
    • Ved manglende bedring etter 72 t behandling for påvist bakteriemi.
    • Ved mistanke om resistensutvikling under pågående behandling .

 

Se også Blodkultur og Blodkultur (mykobakterier).

 

Ved klinisk mistanke om systemisk gjærsoppinfeksjon anbefales alltid Mycosis- flaske i tillegg til ordinære aerobe og anaerobe medier. 

 

For dyrkning av mykobakterier og dimorfe sopp fra blod må mikrobiologisk avdeling kontaktes før prøvetaking da dette krever egne blodkulturflasker (Myco/F Lytic).

Prøvetakingslokalitet 

  • Anbefalt prøvetakingssted er perifer vene.
  • Blodkulturer bør ikke tas via SVK eller andre inneliggende katetre grunnet kontamineringsfare, med mindre det ikke er mulig å få anlagt blodkulturer på annen måte. Dette må i såfall angis i kliniske opplysninger.
  • Ved mistanke om kateterrelatert blodbaneinfeksjon bør det tas blodkultur fra aktuelle kateter samtidig som det tas perifere blodkulturer.
  • Det bør tas minst to sett blodkulturer (2 aerobe og 2 anaerobe flasker) fra ulike stikk
    • Minst to sett bør som regel tas innen 24 timer.  
    • Ett ekstra sett kan vurderes for å øke sensitiviteten.
    • Ved vanskelig prøvetaking bør totalt blodvolum prioriteres foran flere stikk. Flere sett kan da tas fra samme stikk.
  • Ved mistanke om endokarditt bør det tas tre sett blodkulturer i løpet av en time før oppstart av behandling. Hvis behandlingsstart avventes og blodkulturer foreløpig er negative, anbefales 1-2 nye sett neste dag. 
  • Ved mistanke om fungemi bør det tas to sett à tre flasker (2 aerobe, 2 anaerobe og 2 mycosis flasker) .
  • For barn må prøvetaking (dyrkningsmedie og volum)  tilpasses barnets vekt. For små barn tas det rutinemessig bare blodkultur til aerob dyrkning. 
    • Nyfødte: 1-3 mL i rosa aerob barneflaske. Prøvetakingsvolum bør være minimum 1 mL, men send det du får selv om det er lite (hos små premature kan 0,5 mL aksepteres).
    • Barn 5-13 kg: 1-3 mL i rosa aerob barneflaske. 

    • Barn 13-36 kg: 8-10 mL i blå/grå aerob flaske. Minimum 5 mL.

    • Barn > 36 kg: Samme anbefalinger som hos voksne. 

    • Se også Pediatriveileder. For nyfødte, se Nyfødtveileder - neonatal sepsis 
  • Prøvetaking bør om mulig gjøres i ekstremitet uten pågående infusjon.
  • Blodkulturer bør tas så snart som mulig etter symptomdebut, og blodkultursettene kan tas samtidig.
    • Prøvetaking bør alltid sikres før oppstart av antibiotikabehandling.
    • Dersom det allerede er startet antibiotikabehandling bør prøvetaking skje like før neste antibiotikadose, når antibiotikakonsentrasjonen er på sitt laveste.
    • Dersom det kun er gitt en dose ved oppstart av behandling bør prøvetaking skje så raskt som mulig. 

Prøvetakingsutstyr 

  • 1 sett med blodkulturflasker =  1 aerob og 1 anaerob flaske (ev. mycosis-flaske/pediatriflaske).
  • Sterilt veneprøvetakingssett, evt. veneprøvetakingssett med steril adapter/engangsholder.
  • Staseslange.
  • Tape og ren bomull.
  • Klorhexidin 5 mg/ml spritoppløsning, evt. desinfeksjonssprit (etanol) 70 %. 
    • Klorheksidinsprit er førstevalg for voksne og barn > 2 mnd. Unntak hos premature og nyfødte i første leveuke jf. Nyfødtveileder.
    • Fabrikkframstilte desinfeksjonstørk (f. eks. Medi-swab®, Alkotip® o. l.) er ikke akseptable til dette bruk.
  • Sterile tupfere eller kompresser.

Dyrkningsmedier (Prøvebeholdere) 

Laboratoriet bruker medier av merket BD BACTECTM. Disse flaskene har vakuum. Flaskene har indikator for volum langs kanten av etiketten, angitt per 5 mL (se bilde under). Mediene har en sensor i bunnen av flaska; denne skal være brun.

 

 BlodkulturBeskrivelse

Aerob  flaske blå/grå kork (BD BACTEC Plus Aerobic/F Culture Vials).

  • Optimalisert for vekst av aerobe mikrober.
  • Gjærsopp vil også vokse i flasken.
  • Anbefalt blodmengde er 8–10 mL per flaske, minimum 5 mL

Anaerob flaske lillal/lilla kork (BD BACTEC Lytic/10 Anaerobic/F Culture Vials). 

  • Optimalisert for anaerobe og fakultative bakterier.
  • Anbefalt blodmengde er 8–10 mL per flaske, minimum 5 mL.

Mycosis flasker grå/grønn kork (BD BACTEC Mycosis IC/F Culture Vials).

  • Inneholder antibiotika og sikrer raskere oppvekst av gjærsopp. Flasken er bedre ved blandingsinfeksjoner med sopp og bakterier og Candida glabrata.
  • Anbefalt blodmengde er 8–10 mL per flaske, minimum 5 mL.
  • Det anbefales at soppflasken tas til slutt.

Aerob barneflaske sølv/rosa kork (BD BACTEC Peds Plus/F Culture Vials).

  • Aerob flaske spesiallaget for små blodvolum.
  • Anbefalt blodmengde er 1–3 mL per flaske. Minimum 0,5mL, maksimum 5 mL.

Myco flasker rød/hvit kork (BD BACTEC Myco/F Lytic Culture Vials). Fås ved å kontakte mikrobiologen i åpningstiden:

  • Ikke-selektiv flaske for vekst av mykobakterier og dimorf sopp. Andre aerobe mikrober vil også vokse i flasken.
  • Anbefalt blodmengde 5 mL.
  • Inkuberes rutinemessig i 6 uker.

Prøvetaking 

  • Håndhygiene før og etter prosedyren, hansker bør brukes i tillegg.
  • Kontroller følgende på blodkulturflaskene:
    • At sensoren i bunnen av flaskene er tilstede (brun bunn).
    • Utløpsdato for mediet.
    • At flaskene er uten sprekker.
    • Flaskehalsen er fri for resinkuler (snu flasken et par ganger for å fjerne eventuell «resinpropp»).
  • Sett flasken loddrett på et bord. Marker 10 ml over væskenivået, med penn eller tusj. Flasken skal fylles opp til markeringen.
  • Ta av plastdekslene på blodkulturflaskene. Desinfiser gummimembranene  med steril tupfer/kompress med klorhexidin 5 mg/ml spritoppløsning, evt. desinfeksjonssprit (etanol) 70 %. La spriten virke i minst 15 sekunder (eller la den tørke) før membranene punkteres.
  • Bruk sterilt veneprøvetakingssett, evt. veneprøvetakingssett med steril adapter.
  • Desinfiser huden med steril tupfer med klorhexidin 5 mg/ml spritoppløsning, evt. desinfeksjonssprit (etanol) 70 %.  Vent ca. 60 sekunder.
  • Premature barn og nyfødte i første leveuke tåler ofte ikke klorhexidinholdig sprit 5mg/ml (se punkt under «Prøvetakingsutstyr»)
  • Desinfiser huden en gang til med en ny steril tupfer.  Vent ca. 60 sekunder.
  • Huden skal lufttørkes helt mellom de to påføringene og før perforasjon av huden, da det er fare for at klorhexidinsprit kan kontaminere blodet.
  • Etter at huden er desinfisert, må innstikkstedet ikke palperes.
  • Punkter venen med veneprøvetakingssettet. Sett den aerobe flasken (blå topp) inn i holderen først og la den trekke 8-10 mL blod. Sett deretter anaerob flaske (lilla topp) inn i holderen og la flasken trekke 8-10 mL blod. Flaskene skal vendes 5-10 ganger umiddelbart etter fylling.
    • OBS! Vakuumet i flasken overgår vanligvis 10 ml. Følg med underveis, slik at det kommer riktig mengde blod i flaskene. Korrekt volum er viktig. Noter på flasken dersom en ikke lykkes å fylle korrekt mengde blod.
    • Anaerob flaske må kobles ut fra holderen før kanylen fjernes. 
  • Sett evt. soppflaske/Mycosisflasken (grønn topp) inn i holderen til slutt og la flasken trekke 8-10 mL blod.
  • Dersom det skal tas andre blodprøver i tillegg tar man disse til slutt. 
  • Alternativt kan 20 ml blod (evt. mindre fra barn) aspireres i sprøyte. Blodet fordeles på blodkulturflaskene med steril prosedyre.
  • Merk begge flaskene med prøvetakingsetikett. Sørg for at etikett står riktig vei; strekkoden på etiketten skal ligge samme vei som strekkoden på blodkulturflasken. Ikke tildekk strekkoden eller volumindikatoren på blodkulturflasken.

Forsendelse 

  • Må transporteres til laboratoriet fortløpende for inkubering i blodkulturskap etter prøvetaking

  • Blodkulturer bør settes i blodkulturskap innen maksimalt 4 timer etter prøvetaking, helst innen 2 timer.
  • Oppbevares i romtemperatur i påvente av inkubering

Merknader 

Også andre presumptivt sterile væsker kan vurderes dyrket på blodkulturmedier forutsatt tilstrekkelig prøvemateriale. Se Sterile væsker. Dette gjelder særlig 

  • Dialysat fra peritonealdialysepasienter. Sendes i tillegg til dialysat på sterilt glass/ sprøyte.
  • Pleuravæske ved mistanke om pleuraempyem. Sendes i tillegg til pleuravæske på Universalbeholder/sprøyte med kork. 
  • Leddvæske ved mistanke om akutt bakteriell artritt. Særlig viktig ved mistanke infeksjon med Kingella kingae hos barn < 5 år. Sendes i tillegg til leddvæske på Universalbeholder/sprøyte med kork. 
  • Leddvæske ved mistanke om proteseinfeksjon. Sendes i tillegg til leddvæske på Universalbeholder/sprøyte med kork. 
Gi tilbakemelding
Fortell oss gjerne hva du var fornøyd med eller misfornøyd med på denne nettsiden.

Vi kan ikke love deg svar på tilbakemeldingen din, men bruker den til å forbedre innholdet. Vi ber om at du ikke deler person- eller helseopplysninger.
Send